Trichomonas vaginalis en medios de cultivo: consumo protéico.

Sixto Costamagna, Gabriela Niizawa, Gabriela Balogh

Resumen


Con el fin de continuar experiencias relacionadas con la endocitosis del parásito Trichomonas vaginalis, en el presente trabajo se comparó la composición proteica de cultivos líquidos con desarrollo de este flagelado y sin él.
Las muestras de flujos vaginales pertenecían a mujeres cuya edad estaba comprendida entre 15 y 40 años y que presentaban tricomoniasis activa. Los exudados vaginales inoculados en medio de cultivo Diamond fueron centrifugados y sonicados. Se dosó su contenido proteico y se separaron las proteínas por electroforesis en geles de poliacrilamida. Del análisis de los resultados de las diferentes muestras, pudo observarse que T. vaginalis consumió proteínas de peso molecular (PM) aparente entre 14 y 60 kDa y agotó el medio de cultivo, lo que quizá explique la declinación de la curva de crecimiento del parásito a las 48/72 horas, luego de haber sido sembrado en el medio de cultivo. El parásito presenta proteínas de PM aparente entre 70-100 kDa que pueden ser propias, o metabolitos proteicos excretados por él. Se comprobó, además, que la presencia de elementos levaduriformes que ejercen un efecto negativo sobre el crecimiento de T. vaginalis produce liberación, en el medio, de proteínas de PM de 180 kDa.


Palabras clave


parasitosis; trichomonas vaginalis

Texto completo:

22-25

Referencias


Mc Lellan R, Spence M, Brockman M, Rafell L and Smith J. The Clinical Diagnosis of Trichomoniasis. Obstetrics and Ginecology.1982; 60: 30-4.

Thomason J and Gelbart S. Trichomonas vaginalis. Obstetrics and Ginecology.1989, 74: 536-41.

Catterall RD. Infecciones del aparato genital por Trichomonas. Clin Med,1972, 11: 1203-9.

Costamagna SR, Vaylet Susana, Prado M y Mezquita L. Trichomonosis: validación de tres pruebas para el diagnóstico por el laboratorio de análisis clínicos. Parasitol al día. 1997; 21: 61-5.

Costamagna SR y Prado Figueroa M. Ultraestructura de Trichomonas vaginalis. Parasitol al día, 1995; 19: 423-4.

Costamagna SR y Prado Figueroa M. Receptores de membrana en Trichomonas vaginalis. XI Congreso Latinoamericano de Parasitología, Lima, Perú.1993.

Terkuile BH and Muller M. Maltosa utilization by extracelular hydrolysis followed by glucose transporte in Trichomonas vaginalis. Parasitology 1995; 110: 37-44.

Alderete JF. The mechanisms and molecules involved in cytoadherence and pathogenesis of Trichomonas vaginalis. Parasitology Today 1995; 11:70-4.

Lowry OH, Rosenbrough NJ, Farr AL and Randall RJ. Protein measurement with foling Phenol-reagent. Journal Biol Chem 1951; 193: 265-75.

Webster P. Endocytosis by African trypanosomes. Eur J Cell Biol 1989, 49: 295-302.

Shapiro SZ and Webster P. Coated vesicles from the Protozoan parasite Trypanosoma brucei: purification and characterization. J Protozool 1989; 36: 344-9.

Coppens I, Opperdoes FR, Courtoy P and Baudhuin P. Receptor mediated endocytosis in the bloodstream from T. brucei. J Protozool. 1987; 34: 465-73.

Pearsons M. Protozoan Cell organelles. Marr, J and Muller, M. Biochemistry and Molecular Biology of Parasites. Academic Press. London, 1995; 233-56.

Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T IV. Nature. 1970; 227: 680-5.


Enlaces refback



Copyright (c) 2019 Sixto Costamagna, Gabriela Niizawa, Gabriela Balogh



Asociación Médica de Bahía Blanca - Castelli 213 - B8000AIE Bahía Blanca - Buenos Aires - Argentina - https://www.ambb.org.ar